Гипоиммунные стволовые клетки и островки Лангерганса

Похожая технология предоставлена в качестве медицинской услуги на нашей клинической базе кафедры экспериментальной медицины (CIRM) под руководством проф. Юрия Захарова, в Бангкоке.

Два ключевых подхода — гипоиммуногенные плюрипотентные стволовые клетки (ПСК) и гипоиммуногенные трупные островки — направлены на преодоление иммунного отторжения при трансплантации островков. Человеческие ПСК представляют собой универсальный источник инсулинпродуцирующих клеток, но иммунное отторжение остается серьезным препятствием. Недавние достижения в технологиях редактирования генов позволили модифицировать ПСК и трупные островки для снижения их иммуногенности. Эти клетки могут быть сконструированы таким образом, чтобы экспрессировать профили с отрицательным результатом на человеческий лейкоцитарный антиген (HLA), одновременно сверхэкспрессируя иммунорегуляторные факторы, такие как CD47, PD-L1 и HLA-G, чтобы избежать иммунного ответа Т-клеток и естественных киллеров (NK-клеток). Эти модификации направлены на создание готовых к применению клеточных терапий на основе островков, совместимых с широким кругом пациентов, потенциально устраняя необходимость в иммуносупрессантах. 

Стратегии генной инженерии для разработки гипоиммуногенных клеток

Тип клеткиСтратегия генной инженерииИсходСсылка
in vitroIn vivo
Уклонение CD8 + Т-клеток
эмбриональных стволовых клеток человекаНокдаун HLA-I с помощью siRNA и блокирование интрателями.Снижение активности Т-клеток в периферических мононуклеарных клетках крови in vitro и in vivo после трансплантации в задние конечности иммунокомпетентных мышей.Длительное выживание в ксеногенных условиях (до 21 дня) наблюдалось у пяти и до 42 дней у двух из семи реципиентов.135 ]
hiPSCsTAP2 KO от ZFNsСниженная активность CD8 + Т-клеток по отношению к производным миелоидным предшественникам и миелоидным клеткам в совместно культивируемой линии аллореактивных CD8 + Т-клеток.17 ]
эмбриональных стволовых клеток человекаB2M KO с помощью адресной доставки AAVСнижение активности Т-клеток в экспериментах по совместному культивированию с периферическими мононуклеарными клетками крови.113 ]
эмбриональных стволовых клеток человекаB2M KO от TALENsСнижение активности Т-клеток в экспериментах по совместному культивированию с периферическими мононуклеарными клетками крови.Снижение инфильтрации Т- и NK-клеток через 2 дня после трансплантации в переднюю большеберцовую мышцу мышей.112 ]
эмбриональных стволовых клеток человекаB2M KO с помощью CRISPR/Cas9Полученные островки нормализуют гипергликемию и замедляют отторжение после трансплантации под капсулу почки у гуманизированных диабетических мышей.133 ]
Уклонение CD4 + Т-клеток
hiPSCsB2M и CIITA KO с помощью CRISPR/Cas9Сниженная активация Т-клеток, вызванная полученными кардиомиоцитами, в экспериментах по совместному культивированию с мононуклеарными клетками периферической крови.138 ]
hiPSCsHLA-DR KO от TALENsСнижение пролиферации CD4 + Т-клеток при совместном культивировании с полученными дендритными клетками.143 ]
hiPSCsHLA-A , HLA-B и HLA-DR KO с помощью CRISPR/Cas9сохранение HLA-CСнижение пролиферации CD4 + клеток и активации NK-клеток.118 ]
Уклонение NK-клеток
эмбриональных стволовых клеток человекаHLA-G OE, вызванный транспозоном piggyBacСнижение пролиферации Т-клеток и лизиса NK-клетками эмбриональных стволовых клеток человека и полученных из них эпидермальных предшественников.120 ]
эмбриональных стволовых клеток человекаB2M KOВстраивание HLA-G1 в локус B2MСнижение цитотоксичности Т-клеток, а также активации и цитотоксичности NK-клеток в отношении полученных кардиомиоцитов.Снижение инфильтрации NK-клеток через 20 дней после подкожной трансплантации у гуманизированных мышей.116 ]
hPSCsB2M KOВстраивание гена HLA-E с помощью AAV в локус B2MУклонение от воздействия CD8 + Т-клеток уменьшило лизис NK-клетками производных CD45 + гематопоэтических клеток.Повышенная выживаемость полученных гемопоэтических клеток CD45 + в течение 3 дней у иммунодефицитных мышей, которым вводили NK-клетки.132 ]
hiPSCsНокаут генов HLA-A , HLA-B и CIITA с помощью CRISPR/Cas9сохранение HLA-CУклонение от цитотоксичности CD8 + Т-клеток и лизиса NK-клетками полученных CD43 + клеток крови и кардиомиоцитовУклонение CD4 + Т-клеток от распознавания CD43 + клеток крови, полученных из клеток крови с дефицитом CIITAУлучшенная выживаемость полученных CD43 + клеток крови в течение 7 дней у иммунодефицитных мышей, получавших добавки либо реактивных Т-клеток, либо NK-клеток.114 ]
индуцированные плюрипотентные стволовые клетки человека (hiPSC) и миопсекомальные плюрипотентные стволовые клетки человека (miPSC)B2M и CIITA KO с помощью CRISPR/Cas9CD47 OE от LVУклонение от активации NK-клеток и уничтожение клеток PSC, а также полученных из них эндотелиальных и кардиомиоцитов.Длительное сохранение тератомы в течение до 50 дней, снижение инфильтрации иммунных клеток и клиренс NK-клеток у аллогенных хозяев.40 ]
Иммунная толерантность
эмбриональных стволовых клеток человекаCTLA4-Ig, PD-L1 OE через HR в локусе HPRT с помощью BACУвеличение размера тератомы и уменьшение инфильтрации Т-клеток CD4 + и CD8 + через 6 недель после трансплантации модифицированных эмбриональных стволовых клеток человека (hESC) и полученных из них фибробластов и кардиомиоцитов гуманизированным мышам.Усиленная инфильтрация Т-регуляторных клеток, секретирующих иммуносупрессивные цитокины испособствовать локальной иммунной защите совместно пересаженных трансплантатов126 ]
эмбриональных стволовых клеток человекаIL-2 (N88D), IL-10, TGF-β OEДлительное сохранение жизнеспособности полученных бета-клеток в течение до 9 недель после трансплантации под капсулу почки у мышей с аутоиммунным диабетом и нормализация гипергликемии133 ]
эмбриональные стволовые клетки мыши и эмбриональные стволовые клетки человекаPD-L1, CD200, CD47, HLA-G/H2-M3, FASL, SERPINB9, CCL21, MFGE8 OE с помощью транспозонов piggyBac и Sleeping Beautyпредохранительный выключатель HSV-TKСнижена активация периферических мононуклеарных клеток крови, моноцитов, дендритных клеток и NK-клеток в отношении клеток пигментного эпителия сетчатки, полученных из эмбриональных стволовых клеток человека.Длительное выживание эмбриональных стволовых клеток мыши (mESC) до 17 дней и тератом до 9 месяцев после подкожной инъекции в область шеи или бока у различных аллогенных хозяев.Эктопически трансплантированные покрытые оболочкой мышиные эмбриональные стволовые клетки обеспечивали локальную иммунную толерантность к совместно трансплантированным ксеногенным человеческим эмбриональным стволовым клеткам в течение до 8 месяцев и аллогенным островкам в течение до 4 месяцев.127 ]
Комплексные подходы
hPSCsHLA-A, HLA-B, HLA-C и CIITA KO с использованием CRISPR/Cas9Гены HLA-G, PD-L1 и CD47 экспрессируются путем введения генов в безопасный локус AAVS1.Уклонение от распознавания Т-клетками, NK-клетками и макрофагами.Длительное сохранение тератомы у иммунодефицитных мышей, сенсибилизированных аллогенными CD8 + Т-клетками.115 ]
Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (iPSC) и индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (hiPSC) макаков-резусовB2M и CIITA KO с помощью CRISPR/Cas9CD47 OE от LVСниженная иммуногенность PBMC и Т-клеток против iPSC в течение до 16 недельСнижение инфильтрации иммунных клеток в трансплантатах через 16 недель после трансплантации.Дифференцированные островки Лангерганса выживают и поддерживают нормальный уровень глюкозы у гуманизированных мышей с диабетом в течение до 30 дней.122 ]
Первичные островковые клетки макака-резусаB2M и CIITA KO с помощью CRISPR/Cas9CD47 OE от LVМодифицированные островки Лангерганса способны выживать и сохранять инсулинозависимость у аллогенного реципиента с диабетом до 6 месяцев.37 ]
hiPSCsНокаут генов HLA-A, HLA-B, HLA-C и RFXANK с использованием CRISPR/Cas9Гены HLA-G, B2M, PD-L1, PD-L2 и RapaCasp9 экспрессируются транспозоном piggyBac.Сниженная иммуногенность Т-клетока также лизис NK-клеток и фагоцитоз макрофагов.RapaCasp9 индуцировал апоптоз имплантатов у иммунодефицитных мышей после инъекции рапамицина.144 ]

pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12492583